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이 미생물학/세균학 연구 수치를 어떻게 해석합니까?

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이것은 내가 수석 프레젠테이션을 하기 위한 연구 기사의 그림입니다. 장내 세균 집단의 세균 복제를 보여주고 있습니다. 연구원들은 분열 종에서 이 영역의 복사본이 가장 적기 때문에 복제 원점 근처의 영역 수가 그래프에서 가장 높은 지점(피크)이고 말단 영역이 가장 낮은 지점이 될 것이라고 가정합니다. 최저점 대 최고점의 비율이 종의 성장률을 반영할 것인지 결정합니다. 그렇긴 해도, 나는 그들의 색 사용을 이해하지 못합니다. 피크에는 오른쪽의 예와 일치하지 않는 여러 가지 색상이 있습니다. 누군가가 이것을 해독하는 데 도움을 줄 수 있는지 궁금하십니까? 감사 해요!


짧은 대답은 색상이 합성 과정에서 박테리아 게놈의 다른 부분적 사본을 나타내는 것처럼 보인다는 것입니다.

박테리아가 복제할 때 염색체의 기원에서 복제를 시작합니다. 사실, 이러한 기원은 박테리아 염색체(말단)의 "끝"에 도달하기 전에 여러 번 복제될 수 있습니다. 오른쪽 그림의 스태킹은 부분적으로 복제된 염색체를 구별하는 데 도움이 되는 색상으로 이를 보여줍니다. 왼쪽의 커버리지 플롯은 딥 시퀀싱의 리드 커버리지를 기반으로 이것이 어떻게 보이는지 보여줍니다(다시 색상은 부분적으로 복제된 다른 염색체를 보여줍니다).


그림에 답이 있다고 생각합니다. "원점 근처에 높은 사본 수". 이것은 x = 4Mbp에서의 스파이크로 그래프에 표시됩니다. 그래프는 또한 ori(2Mbp) 반대편 지점에서 읽기 횟수가 가장 낮다는 것을 보여줍니다.

Mbp는 메가 염기 쌍 또는 100만 뉴클레오티드를 나타냅니다. 그래프에서 Mbp는 염색체 상의 한 점을 말하며, 4Mbp는 복제원점(ori)인 '12시'에, 2Mbp는 ori 반대편 '6시'에 있는 염색체 상의 한 점을 의미합니다. 연구진은 염색체 상의 특정 위치(x축)에 매핑되는 DNA 조각(y축)의 수를 측정하고 있다. 약간 색맹인데 색이 대체로 잘 어울리는 것 같아요. 또한 x축 오른쪽의 가장 아래에 있는 대괄호에 속하는 판독값은 전체 x축에 걸쳐 있습니다. 이는 이들 단편이 염색체에 완전히 매핑되기 때문이며 실제로는 '원래 게놈'으로 표시되어 있기 때문입니다.

도움이 되기를 바랍니다.


먼저 그림에 대한 추가 정보를 제공해 주시면 도움이 될 것입니다(어떻게 만들어졌는지, 데이터 기반인지 아니면 모델을 대표하는지).

진행해야 할 일이 거의 없다는 점을 감안할 때 두 가지 정보를 제공할 수 있으며 이에 대해 생각하는 데 도움이 되기를 바랍니다. 하지만…

이 데이터는 주어진 시점에서 많은 세포에서 분리된 복제 박테리아 게놈의 스냅샷인 것 같습니다. 그림의 오른쪽은 복제 과정에서 중간에 포착된 많은 작은 게놈 단편이 있는 검은색 (원형) 게놈 모델을 보여줍니다. 왼쪽은 선형 표현으로 펼쳐진 동일한 조각을 보여줍니다.

녹색 조각은 복사가 거의 완료되었으므로 가장 큽니다. 다른 색상은 복사 프로세스의 다른 지점에서 다른 크기의 조각을 보여줍니다. 그래프는 크기가 다른 조각의 수를 성장률과 관련시키기 위한 것 같습니다(같은 수의 세포에서 조각을 측정한다고 가정).

그래서, 이것은 당신에게 무엇을 알려줍니까? (여기서 스스로 생각해 보고 이것이 좋은 척도라고 생각하는지 판단하는 것이 도움이 될 것이라고 생각합니다.)


정의:

정량 분석
미생물 수를 결정하는 분석

정성적 분석
유기체의 존재 여부를 판단하는 분석

CFU
식민지 형성 단위

COA
분석 증명서

이 부분은 대표적인 샘플이며 정확하고 종합적인 결과를 제공합니다.

생물이 검출되지 않은 결과를 보고할 때 보고 기준에 따르면 0을 보고할 수 없지만 <1을 보고해야 합니다.

샘플은 테스트 목적으로 희석되기 때문에 결과를 보고할 때 이 희석도 고려해야 합니다. 예를 들어, 1:10의 희석에서 콜로니가 검출되지 않으면 결과는 <10이 됩니다.

이 결과는 유기체가 검출되지 않은 보고 가능한 가장 낮은 결과입니다.

ISO 7218, '식품 및 동물 사료의 미생물학 - 미생물 검사에 대한 일반 규칙'에서 발췌한 내용을 참조하십시오.

9.3.5.3.2 시험 시료(액체 제품) 또는 초기 현탁액(기타 제품) 수준의 두 접시에 집락이 포함되지 않은 경우 다음과 같이 결과를 표시합니다.
밀리리터당 미생물 1개 미만(액체 제품)
그램당 미생물 1/d 미만(기타 제품)
(여기서 d는 초기 현탁액의 희석 계수)'

이 결과는 미생물 수가 시험 방법의 상위 가산 범위에 도달했음을 나타냅니다. 카운트는 TNTC(Too Numerous to Count)이므로 테스트의 상위 가산 범위 이상(>)으로 보고됩니다.

카운트가 권장 가산 범위를 초과하지만 계산할 수 있는 경우 결과는 'E'로 보고되어 카운트가 권장 가산 범위를 벗어남을 나타냅니다.

결과 보고 형식은 ISO 표준 7218, '식품 및 동물 사료의 미생물학 - 미생물 검사에 대한 일반 규칙'에 따라 결정됩니다.

이 표준은 다음을 지시합니다.
액체 샘플에서 성장 부재에 대한 검출의 최저 한계는 <1입니다.

시료를 검사하기 위해 고형식품을 희석하기 때문에 성장불능 검출의 최저한계는 <10이다.

샘플의 대표적인 부분이 분석되기 때문에 결과는 테스트한 샘플 부분에서 성장이 얻어지지 않았음을 나타냅니다.
따라서 '성장 없음' 또는 '0'의 결과는 샘플 희석이 보고되지 않거나 고려되지 않기 때문에 과학적으로 정확하지 않습니다.

'E' = 예상
대부분의 정량적 참조 방법에는 보고 가능한 결과 범위가 권장됩니다. 이 범위를 벗어난 카운트가 보고되면 기호 'E'를 사용하여 표시됩니다. 이 개수는 최종 개수가 권장 보고 범위를 벗어난 실제 집락을 나타냅니다.

예시:
TVC(Total Viable Count)의 가산 범위는 희석액당 30-300 CFUs/g입니다. COA의 결과는 다음 카운트에 대해 다음과 같이 표시됩니다.
평균 CFU 수 = 10 – 결과 = 10 E
평균 CFU 수 = 350 – 결과 = 350 E
(해석의 편의를 위해 위의 예에서는 희석 계수를 포함하지 않았습니다)

당사는 모든 결과를 국제 표준인 ISO 7218, '식품 및 동물 사료의 미생물학 - 미생물 검사에 대한 일반 규칙'에 따라 보고합니다.

9.3.5.3.1 및 9.3.5.3.2 항목을 참조하십시오. 여기서 결과 계산 및 보고와 관련하여 다음이 명시됩니다(아래 참조).

'9.3.5 결과 표현
9.3.5.3 추정 카운트
9.3.5.3.1 테스트 샘플(액체 제품) 또는 초기 현탁액(기타 제품) 수준에서 두 개의 접시에 15개 미만의 집락이 포함되어 있는 경우 두 접시에서 계산된 집락의 산술 평균 y를 계산합니다.
결과를 다음과 같이 표현합니다.
액체 제품의 경우: 밀리리터당 예상 미생물 수 NE = y
기타 제품의 경우: 그램당 예상 미생물 수 NE = y/d
(여기서 d는 초기 현탁액의 희석 계수).'

9.3.5.3.2 시험 시료(액체 제품) 또는 초기 현탁액(기타 제품) 수준의 두 접시에 집락이 포함되지 않은 경우 다음과 같이 결과를 표시합니다.
밀리리터당 미생물 1개 미만(액체 제품)
그램당 미생물 1/d 미만(기타 제품)
(여기서 d는 초기 현탁액의 희석 계수).'

예비 결과는 완료된 분석을 나타냅니다. 완료되지 않고 보류 중인 결과도 표시할 수 있습니다.

예비 결과는 클라이언트의 요청에 따라 제공될 수 있습니다. 클라이언트는 추가 테스트 요구 사항을 설정하는 데 사용할 수 있습니다. 최종 보고서가 발행되기 전에 검사실에서 고객에게 결과를 전달하는 데 사용할 수 있습니다.

예비 결과가 분석 인증서 형식으로 제공되는 경우에는 서명되지 않습니다. 서명은 결과 및 요청이 기술 서명자에 의해 확인되었으며 결과가 완료되었음을 나타냅니다.

특정 참조 방법은 추정 양성 결과가 있는 샘플에 추가 확인이 필요하다고 규정합니다. 따라서 확인은 방법을 완료하고 최종 결과를 '양성' 또는 '검출'로 보고해야 하는 의무입니다.

추정 집락이 없는 결과는 방법에 따라 완료됩니다. 추가 확인을 수행할 수 없으며 따라서 이러한 샘플에 대한 추가 결과나 확인 비용이 필요하지 않습니다.

따라서 결과 및 확인 수행과 관련된 추가 비용은 분리됩니다.

NR은 보고할 수 없는 결과를 나타내며 COA의 결과 열에 표시됩니다. 결과는 여러 가지 이유로 보고되지 않을 수 있습니다.

NR은 얻은 결과가 미생물학적으로 건전하지 않은 경우에 보고됩니다. 예를 들어, 계수가 실험실에서 허용되는 한계 내에 있지 않거나 식품 매트릭스가 시험 배지에 영향을 주어 전형적인 박테리아 특성을 나타내지 않는 열거된 집락이 생기거나 결과가 나타납니다.

NR의 경우 해당 특정 분석에 대한 비용이 제거되고 결정적인 결과를 얻기 위해 분석을 위해 해당 특정 샘플을 다시 제출하는 것이 좋습니다.


범위 및 임무

미생물학의 개척자 미생물학의 전체 스펙트럼에 걸쳐 엄격한 동료 검토 연구를 출판하는 해당 분야의 선도적인 저널입니다. Washington State University의 Field Chief Editor Martin G. Klotz는 뛰어난 국제 연구원 편집 위원회의 지원을 받고 있습니다. 이 다학문 오픈 액세스 저널은 전 세계의 연구자, 학계, 임상의 및 대중에게 과학적 지식과 영향력 있는 발견을 전파하고 전달하는 데 앞장서고 있습니다.

우리가 보이지 않는 대다수의 생명체를 훨씬 더 잘 고려함에 따라, 미생물이 촉진하는 생지화학적 과정을 풀어서 미생물이 공동 진화하는 바이러스 및 거대 유기체와 상호 작용하는 규칙을 점점 더 확인함에 따라 지구를 모든 형태의 생명체가 거주할 수 있도록 만듭니다. 건강과 질병, 그리고 우리가 미생물 군집의 풍부함, 다양성, 분포 및 활동에 대한 인위적 활동의 해로운 영향을 완화하기 위한 더 많은 더 나은 전략을 발견함에 따라, 미생물학의 개척자 이 모든 진행 상황을 해당 분야의 전문가와 더 많은 독자들에게 전달하는 21세기 접근 방식이 될 것입니다.

미생물학의 개척자 출판 윤리 위원회 위원입니다.


가상 연구소 및 무역

이것은 베타 소프트웨어입니다. 우리는 여전히 이러한 실험실을 테스트하고 구축하는 과정에 있습니다. 버그, 오디오와 텍스트 간의 불일치 등이 발생할 수 있습니다. 이것이 반드시 최종 빌드의 품질과 상태를 반영하는 것은 아닙니다.
질문이나 우려 사항이 있으면 [email protected]로 문의하십시오.

현미경 비디오 재생 사용

이 작업은 2008-38411-19055 및 2011-38411-30625의 두 가지 고등 교육 챌린지 보조금 프로젝트에 따라 USDA CSREES 및 USDA 국립 식품 농업 연구소의 지원을 받았습니다. © 2008-2021 NMSU 이사회. 협력 대학 사우스다코타 주립대학, 노스다코타 주립대학 및 뉴멕시코 주립대학은 모두 동등한 기회/긍정적 행동 고용주이자 교육자입니다.

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오타, 깨진 링크 또는 사이트의 기타 기술적 문제와 같은 웹 문제의 경우 NMSU Innovative Media Research and Extension에 문의하십시오.


Taylor Autry의 미생물학 미지의 실험실 보고서

이 논문에서 나는 어떻게 두 개의 미지의 박테리아를 발견하게 되었는지에 대해 논의할 것입니다. 이것은 여러 가지 이유로 제 직업에 참여하는 데 중요한 작업이 될 것입니다. 의료 분야에서는 다양한 종류의 박테리아와 감염이 진료의 핵심입니다. 환자를 적절하고 효율적이며 안전하게 치료하려면 이러한 박테리아를 식별할 수 있어야 합니다.


재료 및 방법:

2014년 3월 20일 교수가 건넨 미지의 번호 123에는 그람 양성균과 그람 음성균이 모두 들어 있었다. 이 시점에서 미생물학 연구실에서 배웠고 우리 연구실 매뉴얼(1)에 설명된 모든 것이 실행에 옮겨졌습니다. 미지의 것을 알아내는 첫 번째 단계는 두 박테리아를 분리하는 것이었습니다. 이를 위해 영양 한천 플레이트를 사용했습니다. 스트릭 방법은 박테리아 중 하나의 순수한 배양물을 분리하기 위해 영양 한천 전체에 박테리아를 퍼뜨리는 데 사용되었습니다. 스트릭법을 하기 위해 분젠버너로 접종루프를 멸균하여 미지의 검체에 넣었다. 루프에서 박테리아를 제거한 후 사분면 행법을 사용했습니다. 이어서, 스트릭 플레이트를 37℃에서 48시간 동안 인큐베이션하였다. 돌아와서 줄무늬 판을 관찰했을 때 판 전체에 녹색이 풍부했습니다. 눈에 띄는 식민지는 단 하나였습니다. 관찰 후, 줄무늬 플레이트의 분리된 콜로니에서 샘플을 채취하고 이를 사용하여 다른 스트립 플레이트를 수행하여 콜로니를 추가로 분리하려고 했습니다. 사분면 방법을 사용하여 콜로니를 추가로 분리할 뿐만 아니라 원래 줄무늬에서 가장 좋은 콜로니에서 샘플을 채취하여 그램으로 염색했습니다. 그람 염색 절차는 실험실 매뉴얼(1)에 지시된 대로 수행되었습니다. 그람 염색은 빨간색, 그람 음성 막대의 결과를 보여주었다. 어떤 생화학적 검사를 시행할지 결정하기 위해 교수가 나눠준 그람 양성과 음성 표를 참고했다. 이전 학기에 실시한 생화학 시험에서, 녹농균 원래 줄무늬 판의 녹색 안료 때문에 이미 의심되었습니다. 식별표를 검토한 결과 결정적인 생화학적 검사는 우유 단백질 카제인을 분해하는 효소 카제아제의 생성을 검사하는 카제인 검사였습니다. 우유 한천을 37도에서 48시간 동안 인큐베이션했습니다. 관찰 후, 박테리아가 카제아제를 생산함을 나타내는 명확한 양성 결과가 나타났습니다. 그람음성균을 확인한 후, 그람양성균을 분리하는 과정이 시작되었습니다. 원래의 알려지지 않은 스톡 123으로 돌아가서, 그람 음성 박테리아의 성장을 억제하는 만니톨 염 한천에 멸균된 접종 모양으로 사분면 줄무늬 플레이트를 수행했습니다. 이 MSA 플레이트를 섭씨 37도에서 48시간 동안 인큐베이션했습니다. 반환 및 관찰 시, MSA는 양호한 분리된 콜로니를 생성하지 못했습니다. Snaric 교수는 원래 스톡에서 다른 MSA 한천을 만들 것을 권고했지만 이번에는 접종 루프 대신 멸균 면봉으로 했습니다. 이 테스트는 또한 48시간 동안 섭씨 37도에서 배양되었고 좋은 분리된 콜로니를 반환했습니다. 이 콜로니에서 샘플을 채취하고 이를 추가로 분리하기 위해 영양 배지 한천으로 옮겼습니다. 배양 후, 이 영양 한천은 많은 분리된 콜로니와 함께 훌륭한 결과를 보였습니다. 분리된 영양 한천에서 샘플을 채취하고 실험실 설명서(1)의 지시에 따라 그램 염색을 수행했습니다. 그람 염색은 투명한 보라색 그람 양성 구균을 보였다. 좋은 그람 염색을 얻은 후 적절한 생화학적 테스트 중에서 선택하기 위해 식별 표를 참조했습니다.

박테리아가 질산염을 질산염으로 환원시킬 수 있는지 또는 일부 더 환원된 형태로 환원할 수 있는지를 검출하기 위해 질산염 테스트를 수행했습니다. 그런 다음 urease 생성을 확인하기 위해 urea 테스트를 수행했습니다. 수행된 모든 생화학 시험은 교수(1)가 제공한 실습 매뉴얼에 설명되어 있으며 학기 초에 실시되었습니다. 표 1과 2는 검사, 목적, 사용된 시약 및 각 검사의 결과를 나열합니다.

그람 음성 박테리아에 대해 다음 테스트를 수행했습니다.

그람 양성 박테리아에 대해 다음 테스트를 수행했습니다.

그람 음성균에 대한 첫 번째 검사는 카제인 검사였습니다. 이 테스트는 갈색으로 변하는 긍정적인 결과를 나타냈는데, 이는 그람 음성균이 우유 단백질 카제인을 분해하기 위해 효소 카제아제를 생성했음을 의미합니다. 이것은 알려지지 않은 주식 123에서 알려지지 않은 그람 음성 박테리아를 결정하는 데 필요한 유일한 테스트였습니다.

표 1: 그람 음성 박테리아에 대한 검사 및 결과

그람 양성 박테리아에 대해 수행된 첫 번째 테스트는 시약을 추가한 후 빨간색으로 변하는 질산염 테스트였습니다. 양성 결과는 박테리아가 질산염을 아질산염 또는 그 이상으로 환원했음을 의미합니다. 질산염 테스트 다음으로 박테리아가 요소분해효소를 생산하는지 확인하기 위한 요소 테스트가 있었습니다. 이것은 박테리아가 우레아제를 생성했음을 의미하는 핫 핑크색 국물을 보여주는 긍정적인 결과를 제공했습니다.

표 2: 그람 양성 박테리아에 대한 검사 및 결과


토론/결론

미지의 #123에는 2개의 다른 박테리아 표본이 포함되어 있었는데 하나는 그람 양성 박테리아이고 다른 하나는 그람 음성 박테리아였습니다. #123에서 처음으로 그람음성균으로 밝혀진 미확인 세균은 다음과 같이 확인되었습니다. 녹농균. 이 확인은 단 한 번의 생화학적 테스트와 면밀한 관찰에 의해 이루어졌습니다. 그람 염색은 원래 수행되었으며 박테리아를 그람 음성으로 식별하는 빨간 막대를 발견했습니다. 기존에 제작된 스트릭 플레이트는 짙은 녹색 색소를 보여 주었는데, 이는 슈도모나스 아우기노사. 다음으로 수행된 검사는 명확한 양성 결과를 보인 카제인 검사였습니다. 카제인 테스트에서 양성 결과를 보이는 유일한 그람 음성균은 녹농균, 따라서 미지의 그람 음성균을 정확하게 확인합니다.

두 번째 알려지지 않은 박테리아는 구균 모양의 그람 양성 박테리아로 확인되었습니다. 이것은 즉시 그람 양성균 중 2개를 지배했습니다. 바실러스 세루스 그리고 고초균. 이것은 두 번째로 알려지지 않은 세 개의 박테리아를 남겼습니다. 황색포도상구균, 포도상 구균 표피, 또는 장구균. 수행된 다음 테스트는 긍정적인 결과를 제공한 질산염 테스트였습니다. 이 검사에 대해 긍정적인 결과를 제공하는 두 가지 박테리아는 다음과 같습니다. 황색포도상구균 그리고 포도상구균 표피. 두 번째로 수행된 검사는 Urea 검사로 미지의 그람 양성균이 포도상구균 표피 왜냐하면 황색포도상구균 부정적인 결과를 제공합니다. 교수님과 상의 후 미지의 세균 2종을 다음과 같이 정확히 확인 녹농균 그리고 포도상구균 표피. 그람 양성균을 분리하려고 할 때 발생한 유일한 문제가 나타났습니다. 알려지지 않은 #123의 그람 음성균은 그람 양성균의 성장을 어렵게 만드는 매우 공격적인 세균입니다. MSA 한천에서도 성공적으로 성장하기 위해 그램 양성을 얻으려면 몇 번의 시도와 몇 번의 분리가 필요했습니다. 두 박테리아를 성공적으로 분리한 후에는 둘 중 하나를 식별하는 데 더 이상 문제가 발생하지 않았습니다.

녹농균 1882년 Carle Gessard라는 약사에 의해 처음 발견된 그람 음성 막대 모양의 박테리아입니다(2). 그의 연구는 독특한 청록색 색소 침착에 대해 알아 냈습니다. 녹농균. 이 박테리아는 토양, 물, 인간, 식물, 하수 및 병원과 같은 거의 모든 곳에서 매우 흔하게 발견되는 많은 환경에서 촉매할 수 있습니다. 녹농균 건강한 사람에게는 거의 영향을 미치지 않기 때문에 기회주의적 인간 병원체라고 합니다. 이 박테리아는 낭포성 섬유증, 암 또는 AIDS 환자인 가장 흔한 면역 체계가 손상된 개인에게 더욱 영향을 미칩니다. (2) 이 특정 박테리아는 병원에 있는 중환자의 최대 2/3를 감염시키는 매우 위험하고 병원성이 있으며 사망률이 40-60%인 대부분의 의료 센터에서 주요 병원체입니다(2). 이것은 낭포성 섬유증 환자에게 가장 위험하며 낭포성 섬유증 사망의 90%와 관련되어 복잡합니다. 그것은 많은 항생제와 화학 요법제에 대한 내성을 구축합니다. "녹농균 통성 호기성 미생물이 선호하는 대사는 호흡입니다.” (MicrobeWiki) 감염 위험이 가장 높은 사람들 녹농균 병원 환경에 있는 사람들, 특히 호흡 기계나 카테터를 사용하는 사람들입니다(3). 일부 사례는 잘못된 수준의 염소가 있는 수영장이나 온수 욕조에서 수영하여 발생했습니다. P. aeruginosa의 전파 및 오염을 방지하기 위해 박테리아는 대부분 오염된 장비와 전문가의 손을 통해 전파되기 때문에 간호사와 의료 전문가는 반드시 무균 기술을 사용해야 합니다. 녹농균 빠르게 항생제에 내성을 갖게 되고 치료가 점점 더 어려워지고 있습니다. 이 특정 박테리아에 대한 올바른 항생제를 선택하는 것이 특히 중요합니다.


미래

연구에 따르면 박테리아가 없는 깨끗한 환경을 만들기 위한 노력이 비만, 암 및 심장병의 증가에 기여하고 있습니다. [6] 전문가들은 "프로바이오틱스"(활성 배양을 가진 요구르트 및 살아있는 박테리아를 함유한 식이 보조제와 같은 식품)가 우리의 건강을 어떻게 개선할 수 있는지 알아내려고 노력하고 있습니다. 미래에는 특정 세균을 환자에게 개별 맞춤 치료제로 처방할 수 있도록 연구가 진행 중이다.

우리의 면역 체계는 우리가 건강을 유지하고 약물에 덜 의존할 수 있도록 올바른 박테리아 조합을 필요로 합니다. 항생제는 우리를 건강하게 유지하는 강력한 도구로 남아 있지만 필요하지 않을 때 사용해서는 안 됩니다. 우리가 더 많이 배울수록, 우리는 단지 해를 입히는 것이 아니라 치유하는 우리 내부의 벌레의 힘을 더 많이 인식하게 됩니다.

모든 NCHR 기사는 Diana Zuckerman 박사와 기타 고위 직원이 검토하고 승인합니다.


양성 대조군: 클로스트리디움 퍼프린젠스 (ATCC 13124)
부정적인 통제: 대장균 (ATCC 25922)

  1. 콜린 카운티 커뮤니티 칼리지 지구
  2. 포틀랜드 커뮤니티 칼리지
  3. ASM 미생물 라이브러리: Endospore Stain Protocol
  4. 오스틴 커뮤니티 칼리지
  5. 웨스턴 미시간 대학교
  6. Sigma-Aldrich Chemie GmbH
  7. Bacteriological Analytical Manual 8판, 개정판 A(1998)
  8. H.J. Conn의 생물학적 얼룩, 9판. R.D. 릴리(1977)
  9. 2011년 가을, Jackie Reynolds, Richland College, BIOL 2421
  10. 미생물 온라인
  11. 위키피디아

&ldquo내포자 염색 - 원리, 시약, 절차 및 결과&rdquo에 대한 3가지 생각

이 염색 절차가 포자 염색 기술과 어떻게 유사합니까?

저는 현재 지역 커뮤니티 칼리지에서 미생물학 수업을 듣고 있습니다. 나는 교수님만 아는 미지의 것이 있다. 나는 3번의 염색 절차를 수행했고 내 미지의 것이 그람 양성 구균, 비산성, 내생포자 형성자임을 확인했습니다. 마이코박테리움일지도 모른다는 생각이 들었다. 제가 제공한 정보에 따르면 맞습니까? 아니면 더 많은 정보가 필요합니까?

안녕하세요 Sagar Aryal님,
의심스럽습니다….
내생포자 염색을 수행하기 전에 박테리아가 내생포자 단계에 있어야 한다고 생각합니다. 어떻게 합니까?


자격 및 앰프 가입

합격 후 학사 과정에 입학할 수 있습니다. PCB가 있는 12번째 클래스 과목. 일부 대학은 PCB 과목에서 50% 점수를 고려합니다.

PG 과정에 입학하려면 학사 학위(B.Sc.) 관련 분야에서. 일부 대학에서는 입학 후보자를 선별하기 위해 자체 입학 시험을 조직합니다. 미생물학 과정의 후보자는 NEET PG 2021, AIIMS PG 2021 및 JIPMER PG 2021에 나타날 수 있습니다.

미생물학을 추구하는 최고의 대학은 다음과 같습니다.

  • 아미티 대학교
  • 바라트 대학교, 첸나이
  • 데비 아힐리아 비슈와비디얄라야
  • Jiwaji University, 이과 학부 및 생명 과학 학부
  • 델리 대학교
  • 벨로레 기독교 의과대학

미생물학자에게 필요한 기술:

  • 명료하고 논리적인 사고
  • 좋은 문제 해결 능력
  • 팀 리더십 능력
  • 좋은 작문 및 의사 소통 기술
  • 뛰어난 정확도
  • 통계 및 관련 컴퓨터 패키지 작업 능력.

관심 있는 뉴스, 과정 또는 이벤트가 있을 때 알림을 받으세요.

이메일을 입력하면 Penn State Extension의 통신 수신에 동의하는 것입니다. 개인 정보 보호 정책을 확인하십시오.

당신의 의견에 대해 감사합니다!

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조항

미생물 군집과 생명공학적 응용 분야에서의 협력

미생물 군집은 생명공학에서 점점 더 많이 활용되고 있습니다. 이러한 많은 응용 프로그램의 효율성과 생산성은 커뮤니티 구성원 간의 협력적 상호 작용의 존재 여부에 달려 있습니다. 이러한 상호작용의 근간이 되는 두 가지 핵심 프로세스는 생태 및 진화(에코-에보) 역학의 일반적인 틀에서 이해할 수 있는 공공재의 생산과 대사성 교차 먹이입니다. 이 검토에서 우리는 미생물 생명 공학 과정에서 협력 상호 작용의 관련성을 설명하고 기계적 기원에 대해 논의하며 진화적 회복력을 분석합니다. 협력적 행동은 협력적 상호작용의 혜택을 받지만 기여하지 않는 '속임수' 세포의 출현으로 인해 손상될 수 있습니다. 그럼에도 불구하고, 협력적 상호작용은 공간적 분리, 진화 역학과 공동체 생태계 사이의 피드백 존재, 환경 조건과 결합된 규제 시스템의 역할, 수평적 유전자 전달의 작용에 의해 안정화될 수 있습니다. 협력적 상호 작용은 환경 스트레스에 대한 더 높은 수준의 견고성으로 미생물 군집을 풍부하게 하고 더 복잡한 형질의 진화를 촉진할 수 있습니다. 따라서 미생물 군집의 진화적 회복력과 해로운 돌연변이를 억제하는 능력을 고려하여 강력한 생명공학 적용을 설계해야 합니다.


비디오 보기: აკადემიური სივრცე მოლეკულური მიკრობიოლოგია (십월 2022).